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液相方法開發(fā)指南-反相色譜

更新時(shí)間:2020-05-22      點(diǎn)擊次數(shù):6790

液相方法開發(fā)指南-反相色譜

前言

近數(shù)年國內(nèi)藥物研發(fā)風(fēng)生水起,十分火爆,而藥物研發(fā)的分析領(lǐng)域必然經(jīng)常需要開發(fā)HPLC檢測方法, HPLC較常用的是反相色譜。本文力求從實(shí)戰(zhàn)中闡述理論,在實(shí)戰(zhàn)中總結(jié)經(jīng)驗(yàn),使得看完本文的讀者就能對(duì)自己實(shí)際工作中的方法開發(fā)有一個(gè)初步的構(gòu)想。R-HPLC方法開發(fā)一般包含四大塊的內(nèi)容:檢測波長、色譜柱、樣品處理、流動(dòng)相。下文將主要從這四個(gè)方面闡述在方法開發(fā)中如何選擇上述參數(shù)。

1
檢測波長

1.1閑述

紫外檢測器是液相中常用的檢測器,絕大部分藥物在該檢測器中有響應(yīng),所以本文僅闡述使用紫外檢測器如何確定檢測波長,其他檢測器的使用將另行說明。

1.2常見做法

目前常見的做法是用選定的稀釋劑或者某個(gè)溶劑將樣品溶解,然后在紫外光譜儀中進(jìn)行全波長掃描,得到各組分的光譜,并確定方法的檢測波長。

很遺憾的說,上面的做法不正確。我們可以想象,當(dāng)組分進(jìn)入檢測器時(shí),它是處在流動(dòng)相中的,也就是說各組分在HPLC中的光譜表現(xiàn)是在流動(dòng)相中的光譜表現(xiàn)。紫外吸收光譜有一個(gè)術(shù)語叫“溶劑效應(yīng)”,是指受溶劑的極性或酸堿性的影響,使溶質(zhì)吸收峰的波長、強(qiáng)度和形狀發(fā)生不同程度的變化。這就意味著如果溶劑與流動(dòng)相不一樣,則上述的光譜和各組分實(shí)際在HPLC中的光譜很可能是不一致的。比如某些易解離化合物在不同pH值的溶劑中,大吸收波長不一樣。

1.3如何確定檢測波長

使用二極管陣列檢測器(開發(fā)方法的時(shí)候優(yōu)先選擇該檢測器)按照確定的方法進(jìn)樣分析,獲得各組分的光譜圖,檢測波長一般選擇主成份的波峰或者波谷處。因?yàn)樵诓ǚ寤蛘卟ü忍庉^為平坦,波長的少許偏差響應(yīng)相差不大,方法在波長這一塊的耐用性較好,而在坡上則正好相反。如果是多組分含量測定,比如復(fù)方制劑的含量測定,可以使用二極管陣列檢測器,分別調(diào)取不同組分的大吸收波長響應(yīng)數(shù)據(jù)。

 

在有關(guān)物質(zhì)的檢測波長選擇中,有一種常見做法是將各個(gè)組分的光譜圖疊在一起,選擇交叉處,因?yàn)樵撎幍母鹘M分響應(yīng)接近,即校正因子將都接近1。這種做法并不提倡,因?yàn)榻徊嫣幋蠖喑鲇谄律希瑱z測波長的變動(dòng)將帶來響應(yīng)值的巨大變化,方法的耐用性非常差,甚至可能導(dǎo)致各組分的響應(yīng)非常不穩(wěn)定。建議波長選擇主峰的波峰或者波谷,因?yàn)橛嘘P(guān)物質(zhì)大部分結(jié)構(gòu)與主成份類似,光譜行為接近,如有結(jié)構(gòu)與主成份相差較大,響應(yīng)也相差很大,可以單獨(dú)制定控制方法(如外標(biāo)法)。

 

2

色譜柱

 

應(yīng)根據(jù)進(jìn)樣量、樣品性質(zhì)、儀器狀態(tài)、其他組分和流動(dòng)相等情況選擇相應(yīng)的色譜柱。

2.1進(jìn)樣量

如有關(guān)物質(zhì)方法,各組分響應(yīng)較弱,為滿足靈敏度的要求,進(jìn)樣量較大,則需考慮色譜柱應(yīng)滿足荷載的要求,避免進(jìn)樣量大導(dǎo)致的柱過載使主峰展寬變形。一般這種情況大多選用大載碳量的25×0.46cm或更大規(guī)格柱,盡可能提高柱荷載。與此相對(duì),含量測定方法一般進(jìn)樣量較小,為減少分析時(shí)間可以選擇較短的色譜柱。

2.2樣品性質(zhì)

反相色譜使用的色譜柱大多是烷基鍵合硅膠,如C18、C8、苯基柱等。硅膠上有硅羥基,硅羥基會(huì)電離成硅氧負(fù)離子。如果供試品為堿性化合物,如鹽酸厄洛替尼,弱堿強(qiáng)酸鹽,則厄洛替尼除了會(huì)與鍵合相產(chǎn)生“相似相容”的反相色譜保留作用外,還會(huì)與硅氧負(fù)離子產(chǎn)生離子色譜的保留作用,即“二次保留”,導(dǎo)致厄洛替尼峰拖尾。

 

解決堿性化合物拖尾有兩個(gè)辦法,一個(gè)是在流動(dòng)相中加入掃尾劑,相應(yīng)內(nèi)容見“流動(dòng)相”。另一種方法是選擇“封尾(也稱封端)”處理的色譜柱。所謂封尾,是因?yàn)殒I合相一般體積較大,C18、C8、苯基等,因空間位阻使得硅膠上硅氧負(fù)離子不能*被鍵合,所以用小分子烷烴與硅膠上殘余的硅羥基鍵合,減少硅氧負(fù)離子的數(shù)量。一般在開發(fā)堿性化合物液相方法時(shí)選擇封尾處理的色譜柱,具體封尾柱的型號(hào)見供應(yīng)商說明書。

 

酸性和中性化合物選擇色譜柱不用考慮硅氧負(fù)離子的影響。

2.3儀器狀態(tài)

選擇色譜柱時(shí),還需考慮儀器是否匹配,選擇小粒徑或小口徑色譜柱,應(yīng)評(píng)估儀器的大耐受壓力是否符合要求。如選擇快速分析柱(短、小粒徑、小口徑),應(yīng)考慮柱外死體積引入的峰展寬,這種情況下建議選擇同一廠家的儀器與色譜柱,避免接頭不匹配增加死體積。

2.4其他組分

如膠囊的溶出檢測中,使用C18柱如果發(fā)現(xiàn)多次檢測后主成分峰變形,一般是因?yàn)槟z囊殼中存在強(qiáng)保留組分,可以選擇另一種保留機(jī)制的色譜柱如氰基柱或氨基柱等。不同類型鍵合相保留機(jī)制各有不同,篇幅有限,另行說明吧(又挖個(gè)坑)。比如苯環(huán)上的細(xì)微差別,如多了個(gè)鹵素,C18柱分不開,可以選擇苯基柱,苯基柱對(duì)于苯環(huán)上細(xì)微差別有良好的分離效果。某些組分分離效果非常差,可以考慮換一個(gè)型號(hào)的色譜柱,比如從島津的ODS-2換成安捷倫的XDB-C18,不同型號(hào)的色譜柱因?yàn)楣に嚨牟顒e選擇性也是有差別的,這沒有規(guī)律,只能是通過實(shí)驗(yàn)來確認(rèn)適用的色譜柱。

2.5流動(dòng)相

應(yīng)選擇與擬定流動(dòng)相匹配的色譜柱,增加色譜柱使用壽命。如流動(dòng)相含0.1%磷酸,就應(yīng)選擇耐酸柱;反之如流動(dòng)相pH較高(>7),應(yīng)選擇耐堿柱。具體哪些型號(hào)色譜柱耐酸或耐堿,見供應(yīng)商說明書。

3


樣品處理3.1稀釋劑選擇

稀釋劑不是只把樣品溶解就可以了,需要考慮“溶劑效應(yīng)”,此溶劑效應(yīng)與上文紫外光譜的溶劑效應(yīng)不是同一個(gè)含義。溶劑效應(yīng)的具體概念及詳細(xì)分析請(qǐng)見拙著《論液相色譜的溶劑效應(yīng)》,不再贅述。選擇稀釋劑時(shí),稀釋劑在滿足溶解供試品的前提下,應(yīng)盡可能與流動(dòng)相性質(zhì)接近,在有機(jī)相比例、pH值等方面,但是一般很少選擇流動(dòng)相作為稀釋劑,因?yàn)榱鲃?dòng)相配制較為麻煩,選擇流動(dòng)相作為稀釋劑增加了工作量;還有就是很多流動(dòng)相中含有緩沖鹽,如果選為稀釋劑,供試品溶液在進(jìn)樣器中產(chǎn)生高壓鹽析現(xiàn)象,固體鹽顆粒會(huì)損壞進(jìn)樣器。稀釋劑一般選擇同初始比例的有機(jī)相-水系統(tǒng)。如果不溶解,需要用其他溶劑溶解的話,建議使用前述的有機(jī)相水系統(tǒng)稀釋10倍以上。絕不能直接用其他溶劑溶解,然后進(jìn)樣分析,因?yàn)楹芸赡墚a(chǎn)生溶劑效應(yīng)和樣品析出堵塞儀器。易解離化合物可以在稀釋劑中加入鹽酸或者氫氧化鈉助溶。

補(bǔ)充說明,一般保留時(shí)間短的組分容易出現(xiàn)溶劑效應(yīng),減少溶劑效應(yīng)可以采取的措施有減少進(jìn)樣量、增強(qiáng)保留、改變稀釋劑、優(yōu)化流動(dòng)相。優(yōu)化流動(dòng)相是因?yàn)槿軇┬?yīng)是稀釋劑和流動(dòng)相相差性質(zhì)較大導(dǎo)致的結(jié)果,也就是二者的相互作用導(dǎo)致的,所以可以通過優(yōu)化流動(dòng)相來消除溶劑效應(yīng)。

3.2供試品濃度

有關(guān)物質(zhì)方法應(yīng)考慮方法的靈敏度,一般主成份峰的響應(yīng)值應(yīng)不低于1000,并將供試品溶液稀釋一萬倍后信噪比應(yīng)不低于10。含量測定方法應(yīng)考慮主成分峰在線性范圍內(nèi),不能分離的雜質(zhì)峰在規(guī)定濃度下應(yīng)可以忽略不計(jì)。

3.3供試品處理方法

如果供試品的處理方法畢竟特殊,還需要在質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)中規(guī)定特殊的處理方法,則需要對(duì)供試品的處理進(jìn)行相應(yīng)的研究。比如片劑的含量測定,直接投片、研成細(xì)粉、除去包衣再研成細(xì)粉、超聲及時(shí)間、震搖及時(shí)間、濾膜吸附、離心等等。這些處理方法都需要進(jìn)行相應(yīng)的研究,以保證樣品的處理符合檢測的需要。比如說片劑含量實(shí)際是100%,而檢測結(jié)果卻是90%,色譜條件沒有問題,問題出在供試品處理時(shí)提取不*。

3.4 衍生化

某些情況下樣品需要衍生化才能滿足質(zhì)量控制的要求,如保留太弱、沒有響應(yīng)、異構(gòu)體無法分離等。

4


流動(dòng)相

4.1流動(dòng)相的種類

反相色譜的流動(dòng)相主要是兩大類:水相和有機(jī)相。水相主要分為兩種:純水和緩沖鹽;有機(jī)相常用的是乙腈和甲醇,其他還有乙醇、異丙醇等。

 

4.1.1 什么情況下用純凈水

 

供試品和主要雜質(zhì)都是中性化合物(即不會(huì)電離或者不易電離)的情況下,流動(dòng)相可以用純水-有機(jī)相系統(tǒng),這種情況不多,所以大多數(shù)都用了緩沖鹽。

 

4.1.2  什么情況下用緩沖鹽

 

供試品或主要雜質(zhì)為易解離化合物,如鹽酸厄洛替尼、帕瑞昔布鈉等一看就是能電離的,根本不用考慮純水,流動(dòng)相需要使用緩沖鹽。易解離化合物的相關(guān)內(nèi)容見《易解離化合物的pKa、離子型、分子型及其HPLC保留特征》,緩沖鹽使用的詳細(xì)內(nèi)容見拙著《方法開發(fā)緩沖鹽選擇指導(dǎo)原則》,本文不再贅述。

 

4.1.3 如何選擇有機(jī)相

 

一般是根據(jù)組分的分離情況、截止波長、壓力等因素選擇有機(jī)相。比如甲醇和乙腈,二者的性質(zhì)不一樣,甲醇有氫鍵,乙腈是偶極矩,在組分間的選擇性不一樣,甲醇分不開的組分可能乙腈能分開,乙腈分不開的組分可能甲醇能分開。低波長下如205nm一般應(yīng)選擇乙腈,乙腈的截止波長較低,在低波長下基線較平坦,此時(shí)不應(yīng)選擇乙醇等溶劑。乙腈作為流動(dòng)相產(chǎn)生的壓力一般也小于甲醇、乙醇等溶劑,如果超過系統(tǒng)允許大壓力的風(fēng)險(xiǎn)較高,應(yīng)選擇乙腈作為流動(dòng)相。流動(dòng)相常用有機(jī)溶劑截止波長親們需要去了解,方法選定的波長應(yīng)遠(yuǎn)大于流動(dòng)相的截止波長。

4.2 如何確定流動(dòng)相比例和梯度

有兩種做法,一種是設(shè)置一個(gè)60分鐘有機(jī)相比例從5%到100%的梯度,并根據(jù)此梯度下各組分的保留的情況決定下一步的優(yōu)化策略。不過實(shí)際工作這么做耗時(shí)太久,推薦做法是等度逐漸降低有機(jī)相比例確定各組分的保留情況,并根據(jù)等度研究的結(jié)果確定是否采用梯度及梯度情況。

 

舉例如下:需要建立一個(gè)有關(guān)物質(zhì)檢測方法,有A、B、C、D、E5個(gè)組分,極性依次增大(分析人員應(yīng)能做到看化合物結(jié)構(gòu)式就能判斷其極性的相對(duì)大小,這對(duì)有機(jī)化學(xué)的功底有一定的要求),即在反相色譜中保留依次減小。首先用80%有機(jī)相分析A, k值為1;分析B,無保留。則CDE三個(gè)保留更弱的組分在該條件下沒有必要進(jìn)樣。

 

因?yàn)锽無保留,所以有機(jī)相應(yīng)直接減少20%,改變條件為60%有機(jī)相,分析B,k值為0.5;此時(shí)需要注意一個(gè)反相色譜的一個(gè)規(guī)則“三倍規(guī)則”,即有機(jī)相比例減少10%,保留值增加2-3倍。該規(guī)則可以準(zhǔn)確預(yù)測中性化合物隨有機(jī)相比例變化的保留情況,易解離化合物因?yàn)楸A糨^為復(fù)雜,可能會(huì)有偏差。改變條件為50%有機(jī)相,分析C……分析E的時(shí)候有機(jī)相比例30%,k值為1。

 

上述的研究就讓我們對(duì)5個(gè)組分的保留有了一個(gè)直觀的了解,必須走梯度,梯度下限應(yīng)不大于30%,上限應(yīng)不小于80%,我們可以設(shè)置梯度為25分鐘從30%升到80%保留5分鐘,然后確定各組分在該梯度下的分離情況,必要的話進(jìn)行調(diào)整。這么做的好處是速度快,一般來說順利的話一個(gè)上午可以完成各組分等度研究,下午確定梯度分離情況,一天完成一個(gè)有關(guān)物質(zhì)方法的開發(fā);另一個(gè)好處就是在等度研究時(shí)就可以確認(rèn)各組分分離情況了,很快就能發(fā)現(xiàn)難分離組分。

4.3添加劑

  4.3.1  掃尾劑

上文說到的堿性化合物因硅氧負(fù)離子的二次保留導(dǎo)致的拖尾,常用二乙胺、三乙胺等小分子有機(jī)胺類化合物飽和硅氧負(fù)離子,使其不能與目標(biāo)化合物產(chǎn)生二次保留。二乙胺、三乙胺一般被稱為“掃尾劑”。不建議在流動(dòng)相中使用掃尾劑,因?yàn)槭褂弥罅鲃?dòng)相容易變質(zhì),噪音變大,且易出鬼峰。一般情況下使用封尾處理的色譜柱可以達(dá)到相同的效果。


    4.3.2  離子對(duì)試劑

如供試品中有強(qiáng)離子化傾向的組分,保留非常弱,為了增強(qiáng)其保留,可以在流動(dòng)相中加入相應(yīng)的離子對(duì)試劑如氫氧化四丁基銨、十二烷基硫酸鈉等。它的原理就是流動(dòng)相相中的離子對(duì)試劑的非極性基團(tuán)與反相鍵合相結(jié)合,其離子化基團(tuán)與強(qiáng)離子化組分陰陽離子相互吸引,增強(qiáng)強(qiáng)離子化組分的保留。如小分子強(qiáng)堿性化合物,如在流動(dòng)相中加入十二烷基硫酸鈉,十二烷基與色譜柱的C18結(jié)合,硫酸陰離子與該化合物形成離子間的保留,極大增強(qiáng)了該化合物的保留。

 

離子對(duì)色譜中即有反相色譜的保留機(jī)制,又有離子色譜的保留機(jī)制。它的保留呈現(xiàn)以下的規(guī)律:強(qiáng)離子化組分的保留隨離子對(duì)試劑的濃度增加而增加,隨pH值的變化而變化,即可以通過調(diào)節(jié)離子對(duì)試劑的濃度和pH值改變強(qiáng)離子化組分的保留。其他中性組分隨離子對(duì)試劑的濃度增加保留可能略有減少,反離子組分的保留極大減少。

 

加入離子對(duì)試劑的缺點(diǎn)是流動(dòng)相容易變質(zhì),污染色譜柱,平衡時(shí)間非常長,基線較差等。所以除非有上述存在強(qiáng)離子化傾向的組分,一般我不愿意使用離子對(duì)試劑。

 

   4.3.3 手性添加劑

 

可以在流動(dòng)相中加入手性添加劑實(shí)現(xiàn)在反相色譜中分離手性異構(gòu)體,當(dāng)然這是比較冷門的做法,有興趣可以了解,一般不大用。使用手性色譜柱分析手性異構(gòu)體是常用的方法。

5

其他

 

方法開發(fā)時(shí)應(yīng)選擇二極管陣列檢測器,在方法開發(fā)過程中考察各組分的峰純度,獲得各組分的光譜圖。

 

方法確定后應(yīng)進(jìn)行初步的驗(yàn)證,如降解試驗(yàn),確認(rèn)降解產(chǎn)物是否能夠分開。降解試驗(yàn)的做法見拙著《分析方法學(xué)驗(yàn)證技巧與重點(diǎn)》。

 

方法開發(fā)是一個(gè)持續(xù)的過程,應(yīng)在工作中持續(xù)評(píng)估方法的有效性和合理性。如本人曾經(jīng)有一個(gè)項(xiàng)目在很后期才發(fā)現(xiàn)片劑經(jīng)研磨后含量測定的結(jié)果低了3個(gè)點(diǎn),然后將供試品處理改成直接投片。

 

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